9.ATAC_seq.md

ATAC-Seq(Assay for Transposase-Accessible Chromatin using sequencing)是一種用於偵測染色質開放區域的高通量定序方法。透過 Tn5 轉座酶將接頭插入開放染色質區域,可捕捉活躍調控元件如啟動子與增強子的活性狀態,是研究染色質構造與基因調控的利器。


一、技術原理

  1. 細胞裂解與核分離:分離出細胞核以進行轉座反應。

  2. Tn5 轉座反應:帶有定序接頭的 Tn5 轉座酶會插入可及性高的開放染色質區域。

  3. PCR 擴增與文庫建構:擴增含接頭的片段以建構文庫。

  4. 高通量定序:常採用 Illumina 平台進行雙端定序。


二、應用範圍

  • 比較不同細胞狀態下的染色質可及性差異

  • 發掘轉錄調控元件如增強子、抑制子位置

  • 整合 RNA-seq 與 ChIP-seq 資料推測調控網絡

  • 單細胞層級染色質開放分析(scATAC-seq)


三、資料分析流程

分析步驟
說明
常用工具

品質檢查

檢查原始 FASTQ 品質

FastQC、MultiQC

去接頭與剪修

清理接頭序列與低品質區段

Trim Galore、cutadapt

比對

將 reads 對齊至參考基因組

Bowtie2、BWA

去除重複與雜訊

排除 PCR duplicates 與線粒體污染

Samtools、Picard

Peak calling

偵測染色質開放區域(Accessible region)

MACS2、Genrich

功能註解與視覺化

對開放區域進行功能註解與熱圖繪製

deepTools、ChIPseeker(R)


四、實驗設計建議

  • 樣本品質:需確保細胞新鮮、完整性佳,避免染色質降解。

  • 細胞數需求:一般建議使用 50,000–100,000 個細胞,亦可執行低細胞或單細胞版本。

  • 轉座時間控制:過度轉座會增加背景與片段過短,需優化條件。

  • 雙端定序建議:可更準確推估轉座位點與片段長度分佈。


五、片段長度與染色質結構解析

  • <100 bp:表示開放區域(nucleosome-free region)

  • ~180 bp:單核小體保護區段

  • ~360 bp:雙核小體保護區段

片段長度分佈圖可解析染色質結構資訊,是 ATAC-seq 的一大優勢。


六、優勢與限制

優勢:

  • 無需抗體,可即時捕捉染色質開放狀態

  • 操作流程簡單、時間短(1~2 天可完成)

  • 解析度高,支援單細胞與多樣組織應用

限制:

  • 資料含高比例線粒體 reads,需特別處理

  • 背景雜訊可能受轉座條件與樣本品質影響

  • 不提供蛋白質結合資訊,建議與 ChIP-Seq 整合解讀


七、單細胞 ATAC-Seq(scATAC-seq)

scATAC-seq 將傳統 ATAC-seq 技術應用至單一細胞層級,能夠解析細胞族群間的染色質開放差異與調控多樣性。

技術特色:

  • 利用微流體平台(如 10x Genomics Chromium)將單細胞包覆並賦予細胞條碼。

  • 每個細胞獨立記錄其染色質可及性訊號。

分析流程(延伸):

分析步驟
說明
工具

條碼解碼與資料建構

產出 cell × peak matrix

Cell Ranger ATAC、ArchR

質量控制與過濾

根據 fragment 數與 TSS enrichment 過濾細胞

ArchR、Signac(Seurat)

降維與聚類分析

使用 LSI + UMAP 進行細胞分類與視覺化

ArchR、Signac

motif enrichment 分析

預測調控因子活性區域與調控 motif 富集

chromVAR、CisTopic

應用場景:

  • 建構細胞命運分化軌跡圖譜

  • 探索腫瘤微環境中的調控異質性

  • 與 scRNA-seq 整合解讀細胞狀態與功能


ATAC-Seq 是快速且高解析的染色質結構分析工具,適用於細胞命運決定、基因調控研究與疾病標誌探索。結合其他轉錄與表觀組學技術(如 scRNA-seq、ChIP-seq、Hi-C),能進一步還原細胞內複雜的基因調控網絡,尤其單細胞技術的整合更成為未來研究趨勢。

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